猪细小病毒病是由猪细小病毒(PPV)引起的猪的以胚胎和胎儿感染及死亡，而母猪本身不显症状的一种母猪繁殖障碍性传染病。目前本病在世界各地猪群中普遍存在，在大多数猪场呈地方性流行。我国80年代中后期频繁从国外引种，使
该病在我国迅速传播。近几年对我国规模猪场造成了严重的危害。
病
原
猪细小病毒属细小病毒科，细小病毒属，单股DNA病毒。病毒粒子分为实心和空心两种，都具有血凝活性，但后者无感染性。病毒粒子含有3种主要结构蛋白A、B、C。
PPV能通过几乎所有猪的原代细胞，如猪肾、猪睾丸细胞等及传代细胞的PK—15、ST、IBRS-2、CP等进行分离，初次分离时，不易产生CPE，
需盲传数代后才产生CPE。
PPV能凝集鼠、大鼠、人O型、猴、小白鼠、鸡和猫的红细胞，其中以豚鼠红细胞最好。病毒粒子对热、消毒药的抵抗力强，对pH适应范围广，能耐受70℃2小时、56℃ 48小时，80℃5分钟则使其丧失感染性，4℃可长期保存。对乙醚、氯伤等脂溶剂有抵抗力。0．5％漂白粉液、2％NaOH液5分钟可杀死PPV，3％甲醛需l小时，甲醛蒸气需相当长的时间才能杀死PPV。
流行病学

感染的公猪及母猪是主要的传染源，病毒常由胎盘感染和交配感染传给胎儿，也可通过被污染的食物、环境由呼吸道、消化道传给易感动物，鼠类是重要的传播媒介。PPV主要感染胚胎、仔猪、育肥猪、母猪、公猪等，但只有母猪表现繁殖障碍，其它不同年龄、种类的猪只不表现临床症状。
本病的流行常发生于春秋产仔季节。常见于初产母猪，一般呈地方性流行或散发，一旦PPV传入阴性猪场，于3个月内几乎100％的猪只都会受到感染，在本病发生后，猪场可能连续几年不断地出现母猪繁殖失败。母猪怀孕期感染后，其胚胎死亡率可达80％-100％。猪感染细小病毒后1-6天可出现病毒血症，1-2小时后随粪便排出病毒，污染环境，7-9天后出现HI抗体，21天内抗体效价可达1：15000，且能持续数年。
症
状

仅怀孕母猪表现症状，母猪在不同孕期感染，分别造成死胎、木乃伊胎、流产等不同症状，在怀孕10-30天感染时，则胚胎死亡并被吸收，在怀孕30-50天感染时，主要生产木乃伊化胎儿，木乃伊化的程度与胎儿日龄有关，由于没有发生严重的胎盘炎或还保留一些活胎儿，所以没有发生流产，木乃伊化胎儿便随活仔猪同时排出，这时的活胎儿不含抗体，但组织中含有大量的抗原，以至持续8个月时仍然能排毒感染其他猪。怀孕50—60天感染时多出现死产，怀孕70天感染的母猪则常出现流产症状，而怀孕70天后感染的母猪则多能正常产活仔猪。此外产仔瘦小、产弱猪、母猪发情不正常、久配不孕等都是PPV感染的临床症状。

病理变化


眼观病变为母猪子宫内膜有轻微炎症，胎盘有部分钙化，胎儿在子宫有被溶解、吸收
的现象。感染胎儿还可见充血、水肿、出血、体腔积液、脱水(木乃伊胎)及坏死等病变。组织学病变为母猪的妊娠黄体萎缩，子宫上皮组织和固有层有局灶性和弥散性单核细胞浸润。感染胎儿死亡后可见多种组织和器官有范围广泛的细胞坏死、炎症和核内包涵体。在大脑灰质、白质和软脑膜有以增生的外膜细胞、组织细胞和浆细胞形成的血管套为特征的脑膜脑炎变化，一般认为这是本病的特征性病变。
诊
断

如果怀孕猪发生流产、死产、胎儿发育异常、木乃伊化等，同时有证据为传染病时，应考虑到PPV感染可能，确诊还要依靠实验室诊断。

(1)病原的分离及鉴定
病原的分离是最确切的诊断依据。但由于PPV的广泛存在，很易发生实验室污染，所以要事先排除培养细胞中的PPV污染(可用荧光抗体技术监测)。一般用流产、死胎或木乃伊胎儿的内脏做为分离病毒的材料，如脑、肾、肺、肝、睾丸、胎盘和肠系膜淋巴结等，其中以肝和肠系膜淋巴结分离率最高。将病料制成1：10悬液，离心后取上清液接种尚未长成的单层的原代仔猪肾细胞或胎猪肾细胞，并观察3—6天，若无病变出现可盲传3代，同时设不接毒的细胞作对照。当出现CPE后可通过荧光抗体技术或电镜检测病毒。做病原的分离时，大于70日龄的死胎不宜送检，否则因有抗体干扰病毒分离，影响检验结果。
(2)血清学技术
血凝和血凝抑制实验：血凝实验可用于检查组织提取物中的病毒抗原。该方法简单易行，但敏感性较低。HI实验用于感染后的抗体检查，只能证明有PPV感染，但不能证明是否新近感染，通过检查双份血清可证明是否新近感染。HI滴度对非特异性抑制因素(具有大分子球蛋白的多种特殊糖蛋白)是非常敏感的，至今已证实人和几乎所有种类动物的血清中存在这些物质。因此，必须用高岭土从血清中把它们排除。HI试验是目前进行的血清学调查运用最广泛的方法。
荧光抗体技术：可直接检查组织中的病毒抗原，较HI敏感，是一种特异性强、且快速的诊断方法。
中和试验：可用于猪感染PPV后抗体检查，该法比HI试验敏感，但是实用性远不如HI，且费时。
ELISA：可用于抗原及抗体的检测，其灵敏度与HI相当，但至今未标准化。待标准化试剂盒出现后，有望取代HI成为抗体监测的常用方法。
分子生物学技术：如核酸探针技术与PCR技术已用于PPV抗原的检测，其灵敏度高，但是目前还难于推广应用。
引起猪繁殖障碍传染性因素中，除PPV外，还有乙型脑炎、伪狂犬病、布氏杆菌病、血凝性脑炎、猪繁殖呼吸综合征等。可通过流行病学、症状、病理变化、血清学及病原分离与鉴定等方面加以区别诊断。

防
制
(1)采取综合性防制措施PPV对外界环境的抵抗力很强，要使一个无感染的猪场保持下去，必须采取严格的卫生措施，尽量坚持自繁自养，如需要引进种猪，必须从无PPV感染的猪场引进。当HI滴度在1：256以下或阴性时，方准许引进。引进后严格隔离2周以上，当再次检测HI阴性时，方可混群饲养。发病猪场，应特别防止小母猪在第一胎采食时被感染，可把其配种期拖延至9月龄时，此时母源抗体已消失(母源抗体可持续平均21周)，通过人工主动免疫使其产生免疫力后再配种。
(2)疫苗预防
近年来，公认使用疫苗是预防猪细小病毒病、提高母猪繁殖率的有效方法，目前已有10多个国家研制出了PPV疫苗。疫苗包括活疫苗与灭活苗。活疫苗产生的抗体滴度高且维持时间长，一般可达数年；而灭活苗的免疫期比较短，一般只有半年。疫苗注射可选在配种前几周进行，以使怀孕母猪于易感期保持坚强的免疫力。为防止母源抗体的干扰可采用两次注射法或通过测定HI滴度以确定免疫时间，抗体滴度大于1：20时，不宜注射，抗体效价高于1：80时，即可抵抗PPV的感染。在生产上为了给母猪提供坚强的免疫力，最好猪每次配种前都进行免疫，可以通过用灭活油乳剂苗两次注射，以避开体内已存在的被动免疫力的干扰。将猪在断奶时从污染群移到没有PPV污染地方进行隔离饲养，也有助于本病的净化。
卫康方案
1、
温
毒
康
100克拌料300-400千克、连用3-5天；
2、
植物血凝素
100克拌料300-400千克、连用3-5天；